自 1992 年綠色熒光蛋白被用于標(biāo)記基因,各種顏色的熒光蛋白被開發(fā)出,目前有上百種的熒光蛋白。在我們的實(shí)驗(yàn)中,經(jīng)常會用到熒光蛋白,但是如何選擇合適熒光蛋白,得到完美的實(shí)驗(yàn)結(jié)果?相信這個問題一直困擾著大家,鑒于此,小編從不同的角度去考慮如何選擇熒光蛋白,希望可以給大家在選擇熒光蛋白方面提供一些幫助。
單體性質(zhì)將熒光蛋白與目標(biāo)蛋白進(jìn)行融合表達(dá),直接地追蹤目標(biāo)蛋白或是定位目標(biāo)蛋白,這就要求熒光蛋白是單體,不能影響目標(biāo)蛋白的功能和定位。因此,我們將熒光蛋白的單體性質(zhì)放在位。
目前體外檢測熒光蛋白單體性質(zhì)的方法有分子篩、沉降平衡,可以通過熒光蛋白分子篩的峰圖是否狹窄,單一粗略的判斷其是否為單體,沉降平衡能夠更加準(zhǔn)確的確認(rèn)其聚合性質(zhì)。我們使用熒光蛋白幾乎都是在細(xì)胞內(nèi)或組織內(nèi),因此我們更加關(guān)心在生理?xiàng)l件下,熒光蛋白的聚合性質(zhì)。
科學(xué)家巧妙地將熒光蛋白與細(xì)胞色素 P450 進(jìn)行融合表達(dá),讓熒光蛋白定位在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的胞質(zhì)面,熒光蛋白的聚合性質(zhì)會使鄰近的熒光蛋白聚合在一起,形成聚集體,在激光共聚焦顯微鏡下能夠看到細(xì)胞核的周圍有很大的點(diǎn)狀結(jié)構(gòu)。小編已經(jīng)用此種方法檢測了多個熒光蛋白。
綠色熒光蛋白(GreenFluorescent Protein,簡稱GFP)是在美國西北海岸所盛產(chǎn)的一種名為Aequorea victoria的水母中發(fā)現(xiàn)的一種可以發(fā)出綠色熒光的蛋白質(zhì)。GFPzui早是在1962年由日本科學(xué)家下村修發(fā)現(xiàn),是由238氨基酸組成的單體蛋白質(zhì),蛋白分子量約為27kD。GFP的晶體結(jié)構(gòu)顯示,蛋白質(zhì)中央是一個圓柱形水桶樣結(jié)構(gòu),長420nm,寬240nm,由11個圍繞中心α螺旋的反平行β折疊組成,桶的頂部由3個短的垂直片段覆蓋,底部由一個短的垂直片段覆蓋,對熒光活性很重要的生色團(tuán)則位于桶的大空腔內(nèi)。實(shí)驗(yàn)表明GFP熒光產(chǎn)生的前提是桶狀結(jié)構(gòu)完整性,去除N端6個氨基酸或C端9個氨基酸,GFP均會失去熒光。原因是GFP生色團(tuán)的形成效率較低,而且形成過程受外界環(huán)境影響較大。
發(fā)光原理:
GFP的第65至67位的三個氨基酸(絲氨酸-酪氨酸-甘氨酸)殘基,可自發(fā)地形成一種熒光發(fā)色團(tuán)。當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)鏈折疊時,這段被深埋在蛋白質(zhì)內(nèi)部的氨基酸片段,得以“親密接觸”,導(dǎo)致經(jīng)環(huán)化形成咪唑酮,并發(fā)生脫水反應(yīng)。在分子氧存在的條件下,發(fā)色團(tuán)可進(jìn)一步發(fā)生氧化脫氫,zui終成熟,形成可發(fā)射熒光的形式。具體過程為:在 O2存在下,GFP分子內(nèi)第67位甘氨酸的酰胺對第65位絲氨酸的羧基進(jìn)行親核攻擊,形成第5位碳原子咪唑基;第66位酪氨酸的α2β鍵脫氫反應(yīng)之后,導(dǎo)致芳香團(tuán)與咪唑基結(jié)合,并zui終自發(fā)催化形成對羥基苯甲酸咪唑環(huán)酮生色。
GFP需要在氧化狀態(tài)下產(chǎn)生熒光,強(qiáng)還原劑能使GFP轉(zhuǎn)變?yōu)榉菬晒庑问剑坏┲匦卤┞对诳諝饣蜓鯕庵校珿FP熒光便立即得到恢復(fù)。一般來說弱還原劑并不會影響GFP熒光,中度氧化劑如生物材料的固定,脫水劑戊二酸或甲醛等對GFP熒光影響也不大。
發(fā)光特性:
GFP吸收的光譜zui大峰值為395nm(紫外),并有一個峰值為470nm的副吸收峰(藍(lán)光);發(fā)射光譜zui大峰值為509nm(綠光),并帶有峰值為540nm的側(cè)峰(Shouder)。雖然450~490nm只是GFP的副吸收峰,但由于該激發(fā)光對細(xì)胞的傷害更小,因此通常多使用該波段光源(多為488nm)。此外,GFP的光譜特性與熒光素異硫氰酸鹽(FITC)很相似,兩者通常共有一套濾光片。GFP熒光極其穩(wěn)定,在激發(fā)光照射下,GFP抗光漂白(Photobleaching)能力比熒光素強(qiáng),特別是在450~490nm藍(lán)光波長下更穩(wěn)定。類似的,GFP融合蛋白的熒光靈敏度遠(yuǎn)比熒光素標(biāo)記的熒光抗體高,抗光漂白能力強(qiáng),因此更適用于定量測定與分析。由于GFP熒光的產(chǎn)生不需要任何外源反應(yīng)底物,因此GFP作為一種廣泛應(yīng)用的活體報(bào)告蛋白,其作用是任何其它酶類報(bào)告蛋白無法比擬的。但因?yàn)镚FP不是酶,熒光信號沒有酶學(xué)放大效果,因此GFP靈敏度可能低于某些酶類報(bào)告蛋白,比如螢火蟲熒光素酶等。
變體:
在GFP發(fā)現(xiàn)的半個世紀(jì)中,陸續(xù)衍生了多個變體,其中zui的要屬其紅移變體——增強(qiáng)型綠色熒光蛋白(enhanced GFP,EGFP;EGFP的zui大吸收峰位于488nm)。其他還包括發(fā)射熒光也發(fā)生改變的變體,包括藍(lán)色熒光蛋白:EBFP,EBFP2,Azurite,mKalama;青色熒光蛋白:ECFP,Cerulean,CyPet;黃色熒光蛋白:YFP,Citrine,Venus,YPet等等
小編發(fā)現(xiàn)綠色熒光蛋白中,單體性質(zhì)比較好的是 mEmerald,該蛋白很少形成大的點(diǎn)狀結(jié)構(gòu),并且目前還沒有稱該蛋白會影響定位的報(bào)道。
此外 mEmerald 是一個非常穩(wěn)定的綠色熒光蛋白,因此可以用于線性的結(jié)構(gòu)光照明超分辨熒光顯微成像。
我們還發(fā)現(xiàn)紅色熒光蛋白中沒有一個單體性質(zhì)特別好,相比較來說,mApple 的單體性質(zhì)zui好,但是在使用該蛋白的過程中,發(fā)現(xiàn) mAppple 會影響某些蛋白的定位,因此在使用紅色熒光蛋白時,要謹(jǐn)記紅色熒光蛋白可能會影響目標(biāo)蛋白的定位。
PK 值每個熒光蛋白都有其zui合適的 pH 值,即在一定的 pH 值下,熒光強(qiáng)度zui高。有的熒光蛋白適合在酸性環(huán)境下使用,相反有的適合在堿性環(huán)境下使用,因此在選擇熒光蛋白時需要考慮熒光蛋白的 PK 值。
在細(xì)胞內(nèi),大多數(shù)細(xì)胞器內(nèi)及細(xì)胞質(zhì)的 pH 值都在 7.0 左右,然而溶酶體內(nèi)的 pH 值就比較低,因此常規(guī)的熒光蛋白并不適合用于標(biāo)記溶酶體內(nèi)的蛋白。
mCherry 的 PK 值比較低,適合在酸性的環(huán)境下使用,可以用于標(biāo)記溶酶體內(nèi)的蛋白,但是該熒光蛋白有一定的二聚性質(zhì),可能會影響目標(biāo)蛋白的定位,在使用該熒光蛋白時要綜合考慮單體性質(zhì)和 PK 值。
在選擇熒光蛋白時,要考慮目標(biāo)蛋白定位環(huán)境的 pH 值,再考慮使用相應(yīng) PK 值的熒光蛋白。同時也可以考慮利用熒光蛋白的 PK 值的特性,幫助我們解決問題。
成熟時間熒光蛋白在發(fā)光之前需要經(jīng)歷轉(zhuǎn)錄、翻譯、折疊等步驟,其中折疊過程占據(jù)了大部分時間,我們將此過程稱之為成熟時間。在標(biāo)記短壽命的目標(biāo)蛋白時,如果熒光蛋白的成熟時間太長,可能會出現(xiàn)在目標(biāo)蛋白開始降解時,熒光蛋白還沒有發(fā)光,導(dǎo)致無法追蹤及定位目標(biāo)蛋白。因此在選擇熒光蛋白時,需要考慮其成熟時間。
小編在實(shí)驗(yàn)時發(fā)現(xiàn),mEmerald、Dendra2 的成熟時間比較快,在用 Lipo2000 轉(zhuǎn)染試劑盒轉(zhuǎn)染 U2OS 細(xì)胞時,轉(zhuǎn)染后四個小時就能夠用熒光顯微鏡觀察到了熒光信號,EGFP 沒有信號。但是在用 P450 方法檢測時,Dendra2 會形成很大的聚集,表明該熒光蛋白的單體性質(zhì)不好,有可能影響目標(biāo)蛋白的定位和功能,在使用該蛋白的過程中應(yīng)該注意這個特性。
為了能夠更早地觀察某些短壽命熒光蛋白的生理特性和定位情況,科學(xué)家正在發(fā)展成熟時間更快的熒光蛋白,并且用于超分辨成像。
光穩(wěn)定性熒光蛋白在發(fā)光的同時會被漂白,逐漸失去發(fā)光能力,因此要想獲得更多的信息,就需要熒光的光穩(wěn)定性好。在普通的熒光成像中,對熒光蛋白的光穩(wěn)定性要求并不是很高,比如激光共聚焦顯微鏡成像時,熒光信號的穩(wěn)定性只需要能保證采集的完整的一張圖即可。
在超分辨熒光成像中,對熒光蛋白的光穩(wěn)定性要求比較高。線性結(jié)構(gòu)光照明顯微鏡要求熒光蛋白始終處于亮的狀態(tài),需要通過結(jié)構(gòu)光采集多幅圖進(jìn)行重構(gòu);非線性結(jié)構(gòu)光顯微鏡則要求熒光蛋白在黑亮之間進(jìn)行多次切換,這就要求熒光蛋白能進(jìn)行反復(fù)的光調(diào)控,并且依舊維持著高的亮度;與非線性結(jié)構(gòu)光顯微鏡一樣,可逆飽和光線性熒光轉(zhuǎn)移顯微鏡也要求熒光蛋白能夠在黑亮之間進(jìn)行反復(fù)的光調(diào)控。
優(yōu)化密碼子大多數(shù)熒光蛋白是來自于海洋生物,因此密碼子偏好性與所要標(biāo)記蛋白的物種有較大的差異,這種密碼子偏好性差異可能會導(dǎo)致熒光蛋白在哺乳動物細(xì)胞或組織中的表達(dá)量極低,以至于看不到熒光信號。
幸運(yùn)的是大多數(shù)熒光蛋白的密碼子已經(jīng)經(jīng)過優(yōu)化,適合在哺乳動物細(xì)胞中進(jìn)行融合表達(dá)。但是當(dāng)需要使用熒光蛋白在其他種屬細(xì)胞內(nèi)表達(dá)時,應(yīng)考慮一下密碼子偏好性。
小編在進(jìn)行線蟲熒光成像時,就遇到過此類問題,沒有優(yōu)化密碼子時,熒光蛋白的表達(dá)量比較弱,在熒光蛋白經(jīng)過密碼密碼子優(yōu)化,并且在 DNA 序列之間插入線蟲的內(nèi)含子后,熒光蛋白的表達(dá)量得到了較大的提高。
在比較少見的物種進(jìn)行熒光成像時,需要把密碼子優(yōu)化這個特性考慮在內(nèi)。
N 端或 C 端在選擇了相應(yīng)的熒光蛋白后,我們需要確定把目標(biāo)蛋白放在熒光蛋白的 N 端或是 C 端。N 端與 C 端的區(qū)別在于目的蛋白,有的目的蛋白對這個要求不高,但某些目的蛋白就要求在特定的位置進(jìn)行融合表達(dá)。
熒光蛋白與目的蛋白融合表達(dá)可能會影響目的蛋白的折疊,這取決于目的蛋白折疊過程中,熒光蛋白所在的那一端有沒有參與蛋白質(zhì)的折疊。
例如,如果目的蛋白的 C 端會被折疊入目的蛋白的內(nèi)側(cè),那么我們把熒光蛋白標(biāo)記在目的蛋白的 C 端,將獲得不到熒光信號;有些目的蛋白在后翻譯的過程會切掉一段,如果熒光蛋白處于被切的一端,那么就不能獲得準(zhǔn)確的目的蛋白的定位信息。
如果標(biāo)記的目的蛋白是一個新的蛋白,我們建議分別進(jìn)行 N 端和 C 端融合表達(dá),以此來確定哪一個是zui好的選擇。除此之外,還可以用免疫熒光來確認(rèn)目的蛋白定位是否與熒光蛋白融合表達(dá)的一致。
綜合以上的介紹,在我們選擇熒光蛋白時,首要考慮的是熒光蛋白的聚合性質(zhì),即是否會影響目的蛋白的功能及定位,其次是熒光蛋白的 PK 值是否與目的蛋白所處的環(huán)境的 pH 值相匹配,然后是熒光蛋白的成熟時間以及目的蛋白的壽命,綜合兩者決定熒光蛋白是否合適,zui后考慮熒光蛋白的光穩(wěn)定性、密碼子偏好性是否合適,zui后考慮目的蛋白放的位置,熒光蛋白是否會影響目的蛋白的功能及定位。
此外,在進(jìn)行熒光成像時,需要考慮顯微鏡所選的濾光片是否與相應(yīng)的熒光蛋白質(zhì)配套,顯微鏡的各種參數(shù)是否合適。值得提醒的是,激發(fā)光的強(qiáng)度不能太高,否則會導(dǎo)致熒光信號的漂白。